高级检索+

过量表达辣椒CaNPR1提高烟草对青枯菌的抗性

党峰峰, 林金辉, 陈成聪, 陈永萍, 黄国栋, 官德义, 何水林

党峰峰, 林金辉, 陈成聪, 陈永萍, 黄国栋, 官德义, 何水林. 过量表达辣椒CaNPR1提高烟草对青枯菌的抗性[J]. 植物科学学报, 2012, 30(5): 494-500. DOI: 10.3724/SP.J.1142.2012.50494
引用本文: 党峰峰, 林金辉, 陈成聪, 陈永萍, 黄国栋, 官德义, 何水林. 过量表达辣椒CaNPR1提高烟草对青枯菌的抗性[J]. 植物科学学报, 2012, 30(5): 494-500. DOI: 10.3724/SP.J.1142.2012.50494
DANG Feng-Feng, LIN Jin-Hui, CHEN Cheng-Cong, CHEN Yong-Ping, HUANG Guo-Dong, GUAN De-Yi, HE Shui-Lin. Overexpression of CaNPR1 Enhances Resistance to Ralstonia solanacearum Infection in Tobacco[J]. Plant Science Journal, 2012, 30(5): 494-500. DOI: 10.3724/SP.J.1142.2012.50494
Citation: DANG Feng-Feng, LIN Jin-Hui, CHEN Cheng-Cong, CHEN Yong-Ping, HUANG Guo-Dong, GUAN De-Yi, HE Shui-Lin. Overexpression of CaNPR1 Enhances Resistance to Ralstonia solanacearum Infection in Tobacco[J]. Plant Science Journal, 2012, 30(5): 494-500. DOI: 10.3724/SP.J.1142.2012.50494
党峰峰, 林金辉, 陈成聪, 陈永萍, 黄国栋, 官德义, 何水林. 过量表达辣椒CaNPR1提高烟草对青枯菌的抗性[J]. 植物科学学报, 2012, 30(5): 494-500. CSTR: 32231.14.SP.J.1142.2012.50494
引用本文: 党峰峰, 林金辉, 陈成聪, 陈永萍, 黄国栋, 官德义, 何水林. 过量表达辣椒CaNPR1提高烟草对青枯菌的抗性[J]. 植物科学学报, 2012, 30(5): 494-500. CSTR: 32231.14.SP.J.1142.2012.50494
DANG Feng-Feng, LIN Jin-Hui, CHEN Cheng-Cong, CHEN Yong-Ping, HUANG Guo-Dong, GUAN De-Yi, HE Shui-Lin. Overexpression of CaNPR1 Enhances Resistance to Ralstonia solanacearum Infection in Tobacco[J]. Plant Science Journal, 2012, 30(5): 494-500. CSTR: 32231.14.SP.J.1142.2012.50494
Citation: DANG Feng-Feng, LIN Jin-Hui, CHEN Cheng-Cong, CHEN Yong-Ping, HUANG Guo-Dong, GUAN De-Yi, HE Shui-Lin. Overexpression of CaNPR1 Enhances Resistance to Ralstonia solanacearum Infection in Tobacco[J]. Plant Science Journal, 2012, 30(5): 494-500. CSTR: 32231.14.SP.J.1142.2012.50494

过量表达辣椒CaNPR1提高烟草对青枯菌的抗性

基金项目: 国家自然科学基金项目(30971718);国家高等教育博士研究基因项目(20093535110004);转基因重大专项(2009ZX08001-015B);福建省自然科学基金(2008J049)。
详细信息
    通讯作者:

    何水林, E-mail: shlhe2007@yahoo.com.cn

  • 中图分类号: Q943.2

Overexpression of CaNPR1 Enhances Resistance to Ralstonia solanacearum Infection in Tobacco

  • 摘要: 对水稻和拟南芥等模式植物的研究表明,NPR1(nonexpressor of pathogenesis-related genes 1)是依赖于SA通路的防御反应调节基因,但在辣椒和烟草等茄科作物中该蛋白的功能还鲜有报道。研究从辣椒cDNA文库中分离获得一个NPR1的类似物全长cDNA(CaNPR1),并获得了其超表达的转基因烟草T1代株系。研究结果表明,这些株系与其野生型植株没有明显表型差异,但却表现出较野生型植株更高的抗青枯菌侵染活性。同时,研究还发现CaNPR1的超表达还显著提高了防御相关基因的表达,表明NPR1在不同植物间具有较强的功能保守性。
    Abstract: The NPR1 (nonexpressor of pathogenesis-related genes 1) gene plays an important role in SA-depended defense response processes in model plants such as Arabidopsis and rice.However,the function and underlying mechanism of this gene in non-model plants,including pepper (Capsicum annuum) and other Solanaceae,remain poorly understood.Here,we report on the functional characterization of CaNPR1 from pepper.Our data showed that the full-length cDNA of CaNPR1 was isolated and overexpression of CaNPR1 was construed in tobacco K326.Compared to wild type K326,CaNPR1-OE lines did not exhibit any phenotypic differences,but exhibited higher resistance to Ralstonia solanacearum inoculation.In addition,this was coupled with enhanced transcript levels of defense-related marker genes,suggesting that CaNPR1 possessed higher conservative function in cross species.
  • 植物功能性状是植物长期对外界环境适应的结果,其差异主要体现在器官(叶片、茎、根和生殖结构)间营养元素分配及形态结构上[1]。叶片作为植物与外界环境接触面积最大的功能构造及对环境变化最为敏感的器官,能反映植物适应环境变化的生存权衡策略[2]。枝作为植物运输水分、营养物质的重要通道和支撑树冠的主要结构,其性状直接影响植株的机械稳定性、空间拓展、防御、固碳和竞争能力[3]。植物功能性状与环境因素的关系是植物功能性状研究的热点,枝叶大小关系和枝叶生物量分配格局是植物与环境相互作用的一个重要维度[4]

    随着植物群落演替的变更,群落周边环境、组成及结构发生的相应变化,土壤因子引起的周围环境(水分、养分等)的重新分配,这些都将对植物的功能性状产生重要影响。目前,关于植物功能性状的研究主要是探讨其在某一特定时间的变化[5],且多集中于叶片功能性状,而对不同演替阶段的动态变化缺乏研究。如王飞等[1]研究发现,随着白刺(Nitraria tangutorum Bobr.)灌丛沙堆的演替,白刺叶片性状发生了从较长、薄、比叶面积与干物质含量升高的开拓性策略转变为叶片变短、较厚、比叶面积与干物质含量降低的保守型策略的变化。综合分析叶功能性状、茎功能性状及其与环境之间的关系更能揭示植物对环境的适应策略。

    毛竹(Phyllostachys edulis (Carrière) J. Houz.)是我国最为重要的经济竹种,广泛分布于浙江、福建、江西、湖南等省份,面积达421.64 × 104 hm2,具有生长快、产量高、用途广、可持续性强等特点[6, 7]。2021年,浙江省毛竹林面积达87.79 × 104 hm2,总株数30.59亿[8]。毛竹林群落结构及其稳定性受人为活动的强烈支配和制约,表现为不同干扰程度的毛竹林乔木层结构和林下植物多样性有显著差异。研究表明,林下植被和上层植物除对有限资源(养分、水)的竞争以外[9],由于林下植被对地下生态过程的影响,以及对上层乔木生产力、光合、呼吸、蒸腾等的影响,植物功能性状也会发生相应变化[10]

    近年来,由于我国竹产业面临着成本、市场、生态和劳动力等压力,竹材、竹笋价格下降,毛竹林经济效益明显下滑,严重影响竹农经营毛竹林的积极性,一些交通不便的边远山区毛竹林疏于管理乃至荒废的现象十分严重,对我国竹产业可持续发展和区域生态环境保护带来了严重的负面影响。疏于管理乃至荒废后毛竹林的林下植被的发育对立竹影响如何,至今鲜有报道。鉴于此,本文分别以毛竹纯林和疏于管理致成的林下植被演替9、21年的毛竹林为实验对象,研究林下植被演替对立竹枝叶形态质量、抽枝展叶效率及生物量异速生长关系的影响,以期揭示在林下植被演替过程中,随着毛竹生长环境和竞争关系的不断变化,毛竹枝叶生长的变化规律及其适应性生长机制,为疏于管理乃至荒废毛竹林的林下植被正向演替的促进或可持续经营能力的恢复提供理论依据。

    研究地点位于浙江省常山县芳村镇棋盘山(29°07′N,118°40′E),海拔450~550 m,属亚热带季风气候,四季分明,雨量充沛。年平均气温17.7 ℃,年平均日照总时数1731.2 h,年平均相对湿度76%,年平均降水量1760 mm,年平均无霜期279 d。实验区位于该县主要饮用水源地芙蓉水库上游,属中低山地貌,土壤类型为沙质红壤。现存植被由次生常绿阔叶林、针(竹)阔混交林、毛竹林等类型组成,森林覆盖率75%以上。该地区毛竹林资源较为丰富,面积达60 hm2以上。早前均采取笋材两用毛竹纯林经营方式,后因当地芙蓉水库的饮用水源区生态移民,毛竹林逐渐疏于管理,林下植被逐渐恢复,形成了不同林下植被演替年限的毛竹林,仅有小面积毛竹纯林由留守农户继续粗放式经营。

    2021年5月下旬,在实验地选择林下植被演替前立地条件和经营类型及经营水平一致,但实施两种经营方式的毛竹林,一种是仅采用6~8年集中采伐一次竹材,伐除4度以上和部分4度竹及弱小竹、倒伏竹、病虫竹等,不进行劈山除杂,也不进行施肥和林地垦复,林下植被发育较好,形成林下植被演替年限分别为9、21年的混交毛竹林;另一种为对照,毛竹林(演替年限为0年)实施笋材两用纯林经营,主要采取季节性劈山除杂和留笋养竹、伐竹等抚育措施,不施肥和林地垦复。每类实验林各0.5 hm2 左右,基本情况见表1。其中,林下植被演替9年毛竹林的乔木树种包括壳斗科、山茶科、蔷薇科、樟科等9科12属13种,优势树种主要有东南石栎(Lithocarpus harlandii (Hance ex Walp.) Rehder)、木荷(Schima superba Gardner & Champ.)、苦槠(Castanopsis sclerophylla (Lindl.) Schottky)、短柄枹(Quercus glandulifera var. brevipetiolata Nakai)、老鼠矢(Symplocos stellaris Brand)、杉木(Cunninghamia lanceolata (Lamb.) Hook.)等。灌木包括山茶科、金缕梅科、豆科、杜鹃花科等8科10属11种,主要有柃木(Eurya japonica Thunberg)、檵木(Loropetalum chinense (R. Br.) Oliv.)、美丽胡枝子(Lespedeza Formosa (Vog.) Koehne)、马银花(Rhododendron ovatum (Lindl.) Planch. ex Maxim.)等。演替21年毛竹林的乔木树种主要有山茶科、壳斗科、冬青科等7科11属15种,优势树种为木荷、东南石栎、苦槠、石栎(Lithocarpus glaber (Thunb.) Nakai)、杉木、青冈(Quercus glauca Thunb.)等。灌木主要有山茶科、杜鹃花科等9科12属15种,包括柃木、马银花、江南越桔(Vaccinium mandarinorum Diels)等。林下植被演替21年毛竹林较演替9年毛竹林乔木密度增加3.4倍,优势度增加8.0倍,灌木密度降低50.00%,优势度降低58.30%。

    表  1  实验毛竹林基本情况
    Table  1.  Basic information on experimental Phyllostachys edulis stands
    演替年限
    Succession
    period / a
    海拔
    Altitude / m
    坡向
    Slope
    aspect
    坡位
    Slope
    position
    毛竹
    P. edulis
    乔灌木
    Arbor and shrubs
    郁闭度
    Canopy
    density
    立竹密度
    Bamboo
    density /
    ind/hm2
    立竹胸径
    Bamboo diameter
    at breast height / cm
    密度
    Density /
    ind/hm2
    树高
    Tree height / m
    地径
    Basal
    diameter / cm
    0500 ± 1036 ± 2.50西2 625 ± 259.40 ± 0.600.60
    9520 ± 1036 ± 2.50西3 150 ± 309.20 ± 0.408 000 ± 550.76 ± 0.080.76 ± 0.070.70
    21490 ± 1036 ± 2.50西2 275 ± 208.90 ± 0.4027 511 ± 1472.42 ± 0.201.69 ± 0.110.85
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    在每种林下植被演替年限的毛竹林中分别随机选择1度、2度标准样竹(立竹,平均胸径无明显差异)各10株,在其上、中和下部分别采集一轮枝盘,分离主枝、侧枝和叶,用卷尺测量枝长度(TSL),游标卡尺测量枝基径(TSD),天平称量枝鲜重(DFM)、叶鲜重(LFM),并取枝、叶样品称量后带回实验室,80 ℃烘干至恒重,计算含水率,获得枝干重(TSM)、叶干重(LDM)。在每种林下植被演替年限的毛竹林每度样竹的主枝、侧枝上分别随机采集90片无病虫害的成熟叶片,放入自封袋内带回实验室,将叶片放入水中沉泡24 h,取出后迅速用吸水纸吸去叶片表面水分,在分析天平上称饱和鲜重(LFM),利用叶片分析系统WINRhizo 2009a扫描记录单叶面积(LA)、叶周长(LP)、叶长(LL)、叶宽(LW)等,后放入75 ℃烘箱内烘至恒重,称单叶干重(LM)。

    枝条叶片数量(LN)由叶总干重和单叶干重计算获得(LN = LDM / LM),总叶面积(ILA)由叶片数量和单叶面积计算获得(ILA = LN × LA),比叶质量(LMA)由单叶干重和单叶面积比值表示(LMA = LM / LA),叶干物质含量(LDMC)由单叶干重与饱和鲜重比值表示(LDMC = LM / LFM),枝干物质含量(TDMC)由枝干重与枝鲜重比值表示(TDMC = TSM / DFM),枝纤细率(SSR)由枝长度与枝基径比值表示(SSR = TSL / TSD)。出叶强度、叶面积比、叶密度、叶枝质量比表征展叶效率,出叶强度(LI)由枝叶片数量和枝干重比值表示(LI = LN / TSM),叶面积比(LAR)由总叶面积与枝干重比值表示(LAR = LA / TSM),叶密度(DLN)由总叶片数量与枝长度比值表示(DLN = LN / TSL),叶枝质量比(LSR)由叶干重与枝干重比值表示(LSR = LDM / TSM),表征枝运输能力的胡波尔值(HV)由枝横截面积与总叶面积比值计算获得。

    采用最小显著差异法(LSD)检验3种毛竹林不同年龄立竹主枝和侧枝的枝、叶性状差异性。对所有枝、叶性状的值进行算数平均,并进行以10为底的对数转换以降低误差,使之符合正态分布。枝叶性状关系采用异速生长方程Y = bMa进行拟合,将等式两边同时取对数,使其转化为lgY = lgb + algM。式中YM分别为因变量和自变量;b为异速常数,即线性关系的截距;a为异速指数,当a = 1时,代表因变量和自变量呈等速生长关系,a > 1或a < 1时,两者表现为异速生长关系。异速指数和异速常数采用标准化主轴估计(Standardized major axis estimation,SMA)获得。同时,计算性状回归斜率的置信区间,然后对斜率进行异质性检验,且在斜率同质时计算共同斜率[11-13]。用R 3.6.3和Excel 2010软件绘制图表。实验数据均为平均值 ± 标准误。

    随林下植被演替的进行,1度竹主枝叶片叶长、叶宽、叶周长、单叶面积均呈下降趋势,演替9、21年的毛竹林均显著低于毛竹纯林,而叶干重显著大于毛竹纯林,比叶面积呈“V”型变化趋势。1度竹侧枝比叶面积也呈“V”型变化趋势。2度竹主枝叶片叶长、叶宽、叶周长、单叶面积、叶干重随林下植被的演替也均呈“V”型变化趋势,演替9年的毛竹林显著低于演替21 年的毛竹林和毛竹纯林,后二者间无显著差异。2度竹侧枝叶片的叶长、叶干重的变化趋势也为“V”型,演替9年的毛竹林显著低于演替21年的毛竹林和毛竹纯林,后二者间无显著差异,其他指标均无显著差异(表2)。

    表  2  毛竹林立竹叶片形态质量性状
    Table  2.  Leaf morphological characteristics of experimental Phyllostachys edulis stands
    演替年限
    Succession
    period / a
    立竹年龄
    Bamboo
    age
    枝类
    Branch
    class
    叶长
    Leaf
    length / cm
    叶宽
    Leaf
    width / cm
    叶周长
    Leaf
    circumference / cm
    叶干重
    Leaf dry
    weight / g
    单叶面积
    Leaf
    area / cm2
    比叶面积
    Specific leaf
    area / cm2/g
    叶干物质含量
    Leaf dry
    matter content /
    g/g
    211主枝9.63 ± 0.28B1.44 ± 0.03B22.02 ± 0.30B33.94 ± 1.79A10.31 ± 0.30B195.53 ± 2.61A0.12 ± 0.00A
    99.88 ± 0.45B1.45 ± 0.03B22.27 ± 0.91B34.23 ± 1.08A10.60 ± 0.67B174.21 ± 1.73B0.14 ± 0.01A
    010.67 ± 0.31A1.52 ± 0.03A24.18 ± 0.48A30.51 ± 0.07B11.97 ± 0.34A200.31 ± 5.13A0.13 ± 0.01A
    21侧枝9.94 ± 0.21A1.46 ± 0.03A22.65 ± 0.45A16.93 ± 0.68A10.81 ± 0.24A200.03 ± 11.11A0.12 ± 0.00A
    910.03 ± 0.26A1.47 ± 0.03A22.54 ± 0.69A18.55 ± 0.16A10.78 ± 0.39A169.83 ± 5.15B0.13 ± 0.01A
    010.20 ± 0.20A1.47 ± 0.04A23.18 ± 0.39A19.52 ± 2.66A11.20 ± 0.40A206.76 ± 8.14A0.12 ± 0.01A
    212主枝10.66 ± 0.08A1.54 ± 0.03A24.26 ± 0.15A24.37 ± 1.94A12.34 ± 0.09A190.20 ± 0.13A0.15 ± 0.01A
    99.96 ± 0.12B1.43 ± 0.04B22.31 ± 0.02B19.09 ± 0.74B10.66 ± 0.23B182.36 ± 1.95A0.13 ± 0.01B
    010.79 ± 0.17A1.56 ± 0.06A24.24 ± 0.38 A27.18 ± 2.00A12.15 ± 0.19A191.78 ± 16.56A0.13 ± 0.00A
    21侧枝10.56 ± 0.13A1.49 ± 0.02A23.41 ± 0.51AB16.18 ± 1.40B11.71 ± 0.19A188.60 ± 0.13A0.14 ± 0.00A
    910.02 ± 0.27B1.47 ± 0.00A22.58 ± 0.56B11.02 ± 0.51C10.98 ± 0.41A184.19 ± 4.80A0.15 ± 0.03A
    010.71 ± 0.20A1.48 ± 0.02A24.20 ± 0.53A19.08 ± 0.89A11.67 ± 0.48A190.47 ± 4.64A0.14 ± 0.00A
    注:不同大写字母表示不同林下植被演替年限毛竹林同一年龄立竹主枝或侧枝叶片间差异显著。下同。
    Note: Different capital letters indicate different vegetation succession years, with significant differences between the leaves of main and side branches of P. edulis stands of the same age. Same below.
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    演替9、21年毛竹林的 1度竹主枝和侧枝的枝长、纤细率显著高于毛竹纯林,主枝和侧枝的枝基径、主枝的枝干物质含量和侧枝的枝干重在3种实验林间无显著差异,演替9年毛竹林侧枝的枝干物质含量显著高于演替21年和毛竹纯林,演替21年毛竹林主枝的枝干重显著高于演替9年和毛竹纯林;演替21年毛竹林2度竹主枝和侧枝的枝长、主枝的枝基径和枝干重显著高于演替9年和毛竹纯林,演替9、21年毛竹林主枝和侧枝的纤细率显著高于毛竹纯林,主枝和侧枝的枝干物质含量在3种毛竹林间无显著差异(表3)。

    表  3  毛竹林立竹枝形态质量性状
    Table  3.  Branch morphological characteristics of experimental Phyllostachys edulis stands
    演替年限
    Succession
    period / a
    立竹年龄
    Bamboo
    age
    枝类
    Branch
    class
    枝长
    Branch
    length / cm
    枝基径
    Branch base
    diameter / mm
    枝干重
    Branch
    weight / g
    枝纤细率
    Branch fineness
    rate / cm/mm
    枝干物质含量
    Branch dry matter
    content / g/g
    211主枝159.78 ± 10.10A9.09 ± 0.05A75.00 ± 1.96A176.12 ± 6.24A0.64 ± 0.02A
    9157.22 ± 2.98A9.18 ± 0.18A60.20 ± 3.35B176.05 ± 11.18A0.64 ± 0.01A
    0143.25 ± 3.47B8.82 ± 0.27A55.31 ± 2.25B163.74 ± 1.19B0.62 ± 0.02A
    21侧枝132.67 ± 5.39A7.12 ± 0.23A36.82 ± 4.36A187.16 ± 2.95A0.64 ± 0.02B
    9128.94 ± 1.59A6.94 ± 0.07A36.56 ± 0.52A189.03 ± 10.30A0.69 ± 0.05A
    0123.48 ± 6.46B7.16 ± 0.47A37.70 ± 3.81A178.30 ± 6.70B0.63 ± 0.01B
    212主枝155.42 ± 6.61A8.23 ± 0.14A57.75 ± 8.71A189.53 ± 7.49A0.61 ± 0.02A
    9137.39 ± 1.42B7.70 ± 0.14B43.20 ± 3.95B180.42 ± 0.70A0.66 ± 0.01A
    0139.22 ± 1.13B7.75 ± 0.07B46.49 ± 3.31B178.86 ± 5.05B0.64 ± 0.01A
    21侧枝137.50 ± 6.50A6.74 ± 0.19A32.52 ± 3.55A203.41 ± 1.92A0.64 ± 0.01A
    9124.11 ± 2.96B6.03 ± 0.07B23.63 ± 0.55B204.49 ± 4.77A0.66 ± 0.01A
    0121.31 ± 10.73B6.59 ± 0.58A29.60 ± 3.56A183.98 ± 4.02B0.64 ± 0.03A
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    在林下植被演替过程中,毛竹林立竹抽枝展叶效率变化情况复杂。随演替的进行,1度竹主侧枝出叶强度、叶面积比、叶密度呈“V”型变化,叶枝质量比呈降低趋势。其中,演替21年毛竹林主枝出叶强度、叶密度显著高于演替9年毛竹林,主枝胡波尔值则相反,侧枝出叶强度、叶面积比在3种实验林间差异显著,演替9、21年毛竹林主枝叶面积比、侧枝叶枝质量比显著小于毛竹纯林,侧枝叶密度在3种实验林间无显著差异,演替21年毛竹林主枝叶枝质量比显著小于毛竹纯林。演替9、21年毛竹林2度竹主侧枝出叶强度、叶面积比、叶密度、叶枝质量比显著小于毛竹纯林,胡波尔值则相反,抽枝展叶效率各指标在演替9、21年毛竹林间均无显著差异(表4)。

    表  4  毛竹林抽枝展叶效率
    Table  4.  Branch and leaf characters of experimental Phyllostachys edulis stands
    演替年限
    Succession
    period / a
    立竹年龄
    Bamboo
    age
    枝类
    Branch
    class
    出叶强度
    Intensity of
    leaf / ind/g
    叶面积比
    Leaf area
    ratio / mm2/g
    叶密度
    Leaf density /
    ind/mm
    叶枝质量比
    Leaf /stem mass
    ratio / g/g
    胡波尔值
    Huber value /
    mm2/mm
    211主枝6.35 ± 0.24A100.12 ± 5.72B4.34 ± 0.54A0.53 ± 0.03B0.00008 ± 0B
    95.65 ± 0.56B93.27 ± 14.77B3.59 ± 0.76B0.55 ± 0.08AB0.00012 ± 0A
    06.12 ± 0.43AB117.82 ± 29.07A3.87 ± 0.70AB0.61 ± 0.07A0.00009 ± 0AB
    21侧枝6.04 ± 0.44B99.34 ± 10.89B2.58 ± 0.34A0.52 ± 0.06B0.00011 ± 0B
    95.17 ± 0.28C84.42 ± 6.93C2.24 ± 0.30A0.51 ± 0.04B0.00012 ± 0A
    06.68 ± 0.84A121.27 ± 23.79A2.73 ± 1.07A0.61 ± 0.12A0.00011 ± 0A
    212主枝4.66 ± 0.34C83.18 ± 8.66B2.25 ± 0.32B0.44 ± 0.05B0.00012 ± 0A
    95.30 ± 0.44B84.18 ± 10.19B2.54 ± 0.53B0.49 ± 0.06B0.00013 ± 0A
    06.16 ± 0.47A123.26 ± 15.38A3.49 ± 0.76A0.64 ± 0.08A0.00009 ± 0B
    21侧枝4.97 ± 0.30B85.52 ± 7.59B1.68 ± 0.49B0.47 ± 0.04B0.00013 ± 0A
    94.94 ± 0.58B82.79 ± 14.92 B1.51 ± 0.27B0.52 ± 0.09B0.00014 ± 0A
    06.72 ± 0.45A136.35 ± 15.92A2.67 ± 0.90A0.73 ± 0.09A0.00009 ± 0B
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    3种毛竹林1度和2度竹主侧枝的叶干重和枝干重均呈正相关(P < 0.05,图1),异速生长指数随林下植被演替的进行呈先升高后降低的趋势。其中,毛竹林1度竹主枝叶干重和枝干重间无显著差异(P = 0.67),均接近1.0,其共同斜率为1.14。演替9年毛竹林1度竹侧枝、2度竹主侧枝的叶干重和枝干重异速生长指数均显著大于1.0,呈异速生长模式,而演替21年、毛竹纯林1度竹侧枝、2度竹主侧枝的叶干重和枝干重异速生长指数接近1.0(P > 0.05),呈等速生长模式,且演替21年毛竹林、毛竹纯林间无显著差异(P = 0.22、P = 0.13、P = 0.76),其共同斜率分别为1.02、0.99、1.13(表5)。

    图  1  毛竹林叶干重与枝干重异速生长关系
    A:1度竹主枝;B:1度竹侧枝;C:2度竹主枝;D:2度竹侧枝。
    Figure  1.  Relationship between total leaf mass and stem mass of experimental Phyllostachys edulis stands
    A: Main branches of 1st-degree bamboo; B: Lateral branches of 1st-degree bamboo; C: Main branches of 2nd-degree bamboo; D: Lateral branches of 2nd-degree bamboo.
    表  5  毛竹林枝-叶质量的SMA分析
    Table  5.  SMA analysis of branch leaf size of experimental Phyllostachys edulis stands
    指标
    Indicators
    演替年限
    Succession
    period / a
    立竹年龄
    Bamboo
    age
    枝类
    Branch
    class
    数量
    Number
    斜率
    Slope
    95%置信区间
    95% CI
    截距
    Intercept
    R2P
    叶干重-
    枝干重
    211主枝301.02(1.14)0.71,1.45−0.320.25< 0.010
    9301.26(1.14)0.92,1.72−0.740.48< 0.001
    0301.15(1.14)0.87,1.51−0.510.42< 0.001
    21侧枝301.14(1.02)0.85,1.51−0.550.51< 0.001
    9301.661.18,2.32−1.340.23< 0.050
    0300.94(1.02)0.74,1.20−0.190.61< 0.001
    212主枝301.28(0.99)0.91,1.81−0.870.36< 0.050
    9301.621.23,2.15−1.390.46< 0.001
    0300.97(0.99)0.86,1.09−0.190.89< 0.001
    21侧枝301.16(1.13)0.86,1.58−0.580.42< 0.001
    9301.831.43,2.35−1.530.70< 0.001
    0301.09(1.13)0.82,1.45−0.310.47< 0.001
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    随林下植被演替的进行,毛竹林立竹叶片变小,2度竹时恢复到毛竹纯林叶片性状水平。1度立竹叶总干重显著增加,2度立竹主侧枝的叶干重、比叶面积和1度立竹比叶面积呈先降低后增加的趋势,可见存在较为明显的演替年限效应和立竹年龄效应。即林下植被的演替对立竹叶面积、叶生物量及资源获取能力产生了影响。这与林下层植被数年后生境复杂、养分、水分和光照等条件存在较大的竞争密切相关。一定程度上也说明毛竹可对不同生境做出相应的适应性判断,符合小叶片、低比叶面积的植物有效防止水分流失、资源消耗,并提高资源利用效率的策略[14-18]。同时,1度立竹主侧枝的枝长、枝纤细率均显著增加,演替21年后2度立竹的枝长、枝纤细率、枝基径显著增加,有助于其提高空间拓展能力,降低同一枝条上叶片之间的相互荫蔽程度,同时合理调整冠层内叶片的排布方式,将叶伸展到适宜的空间形成合理的光拦截体系,增强光捕获能力,提高光合效率[19-21]。但随着演替的进行,叶片大小和比叶面积趋于恢复,其原因可能是林内乔木逐渐占据林冠上层,且郁闭度不断增加,乔木与立竹间的光资源竞争加剧,毛竹通过增加叶片、比叶面积快速充分捕获光资源[15];此外,林下植被演替21年后,林地枯枝落叶层增厚,土壤养分、有机质含量提高,酸性渐减,土壤理化性质得到较大改善[22],因此演替21年的毛竹林叶长、叶宽、叶面积等与毛竹纯林相似。可见,由于常年再生和更新,毛竹叶片对环境变化较枝条更敏感,且可塑性更大[23, 24],充分体现出植物枝叶形态质量采取不同的资源利用策略,以适应外界的改变。

    抽枝展叶反映了植物生长过程中的碳收支策略[25],不仅受自身遗传因素的影响,还受水分、光照、温度等多种生态因子的制约[26]。本研究发现,随林下植被演替的进行,立竹抽枝展叶效率显著降低,其中1度竹的变化复杂且存在恢复趋势,2度竹相对稳定,存在较为明显的演替年限效应和立竹年龄效应。随林下植被演替的进行,枝条的生长速度快于叶片的生长速度,枝长生长快于枝茎(纤细率显著增加),以实现快速拓展空间,减少叶片遮挡,增强截获光能的效率,同时可以在水分竞争激烈的环境中降低叶片蒸腾,并提高水分传导效率[27]。2度竹较1度竹的变化显著,分析其原因,毛竹是大型克隆植物,通过克隆整合,2度竹将养分、水分及各种次生代谢物质经由相连的地下鞭转移至1度竹用于生存、生长[28],由于生境中资源的限制,2度竹采取降低展叶效率的低投入、稳收益的保守型生存策略。这说明植物抽枝展叶效率除了随植物所处生境的变化而改变的同时,也受植物个体发育阶段和物种遗传特性的影响[29]

    生物量分配格局是决定植物获取资源、反映植物竞争能力的重要指标[30],对有机体的适合度有重要影响,是克隆植物适应异质生境的优势策略[31],通过平衡构件生物量分配比例来调节构件对资源的竞争作用,以保证自身能够最大化地利用受限资源。本研究结果表明,演替9年毛竹林立竹叶生物量-枝生物量异速生长指数显著大于演替21年毛竹林和毛竹纯林,且演替9年毛竹林的叶生物量-枝生物量呈异速生长关系,演替21年的毛竹林和毛竹纯林具有等速生长关系,拥有共同斜率,说明随枝支撑投入的增长,演替9年的毛竹林叶片同化投入的增长高于毛竹纯林和演替21年的毛竹林,这与朱强根等[32]报道不同营林模式对毛竹枝叶生物量分配的异速生长关系具有强烈影响的研究结果一致。同时也说明林下植被演替一定年限促进了毛竹叶片的生物量积累,改变了生物量分配格局,促使更多的生物量向光合器官分配,以产生更多的光合同化产物,有利于出笋成竹,提高种群的稳定性和拓展能力[33]。演替21年毛竹林叶片同化投入的增长和枝支撑投入恢复等速增长,可能与随林下植被演替的进行,大量壳斗科、山茶科等乔灌木树种入侵并发育充分,地下部分对水分和养分的争夺严重影响立竹的生长发育,导致叶片同化投入和枝条支撑投入的收益递增型转变为保守的收益均衡型等有关。反映了毛竹叶、枝生物量的分配投资因生境的差异而变化[34],且对资源利用具有灵活的分配模式和明显的演替年限效应。

    随林下植被演替的进行,1度立竹枝长、枝纤细率显著增加,2度立竹枝干重、枝基径显著减小后趋于恢复,演替21年毛竹林的枝干重显著增加。1度竹叶面积显著降低,2度竹显著减小后趋于恢复。1度、2度立竹抽枝展叶效率均显著降低。叶生物量-枝生物量由等速生长关系转变为异速生长关系,而后趋于恢复。研究结果表明林下植被演替会对毛竹枝叶形态、抽枝展叶效率和枝叶生物量投资产生重要影响,并存在明显的演替年限和立竹年龄效应,随演替年限的增加,叶片同化投入和枝条支撑投入由收益递增型转变为保守的收益均衡型。林下植被演替是一个复杂的过程,需结合立竹其他构件的生长状况及生产力发挥等开展进一步研究,为促进林下植被的正向演替或恢复毛竹林可持续经营能力及生态功能的评价提供科学依据。

  • [1] Ryals J A,Neuenschwander U H,Willits M G,Molina A,Steiner H Y,Hunt M D.Systemic acquired resistance[J].Plant Cell, 1996, 8(10): 1809-1819.
    [2] Ma W,Smigel A,Tsai Y C,Braam J,Berkowitz G A.Innate immunity signaling: cytosolic Ca2+ elevation is linked to downstream nitric oxide generation through the action of calmodulin or a calmodulin-like protein[J].Plant Physiol, 2008, 148(2): 818-828.
    [3] Makandar R,Nalam V,Chaturvedi R,Jeannotte R,Sparks A A,Shah J.Involvement of salicylate and jasmonate signaling pathways in Arabidopsis interaction with Fusarium graminearum[J].Mol Plant Microbe Interact, 2010, 23(7): 861-870.
    [4] Han L,Li G J,Yang K Y,Mao G,Wang R,Liu Y,Zhang S.Mitogen-activated protein kinase 3 and 6 regulate Botrytis cinerea-induced ethylene production in Arabidopsis[J].Plant J, 2010, 64(1): 114-127.
    [5] Larkindale J,Knight M R.Protection against heat stress-induced oxidative damage in Arabidopsis involves calcium,abscisic acid,ethylene,and salicylic acid[J].Plant Physiol, 2002, 128(2): 682-695.
    [6] Liu H T,Liu Y Y,Pan Q H,Yang H R,Zhan J C,Huang W D.Novel interrelationship between salicylic acid,abscisic acid,and PIP2-specific phospholipase C in heat acclimation-induced thermoto-lerance in pea leaves[J].J Exp Bot, 2006, 57(12): 3337-3347.
    [7] Nakashita H,Yasuda M,Nitta T,Asami T,Fujioka S,Arai Y,Sekimata K,Takatsuto S,Yamaguchi I,Yoshida S.Brassinosteroid functions in a broad range of disease resistance in tobacco and rice[J].Plant J, 2003, 33(5): 887-898.
    [8] Jonak C,Okresz L,Bogre L,Hirt H.Complexity,cross talk and integration of plant MAP kinase signalling[J].Curr Opin Plant Biol, 2002, 5(5): 415-424.
    [9] Rushton P J,Somssich I E,Ringler P,Shen Q J.WRKY transcription factors[J].Trends Plant Sci, 2010, 15(5): 247-258.
    [10] Wu Y,Deng Z,Lai J,Zhang Y,Yang C,Yin B,Zhao Q,Zhang L,Li Y.Dual function of Arabidopsis ATAF1 in abiotic and biotic stress responses[J].Cell Res, 2009, 19(11): 1279-1290.
    [11] Xia N,Zhang G,Liu X Y,Deng L,Cai G L,Zhang Y,Wang X J,Zhao J,Huang L L,Kang Z S.Characterization of a novel wheat NAC transcription factor gene involved in defense response against stripe rust pathogen infection and abiotic stresses[J].Mol Biol Rep, 2010, 37(8): 3703-3712.
    [12] Tsutsui T,Kato W,Asada Y,Sako K,Sato T,Sonoda Y,Kidokoro S,Yamaguchi-Shinozaki K,Tamaoki M,Arakawa K.DEAR1,a transcriptional repressor of DREB protein that mediates plant defense and freezing stress responses in Arabidopsis[J].J Plant Res, 2009, 122(6): 633-643.
    [13] Oate-S醤chez L,Anderson J P,Young J,Singh K B.AtERF14,a member of the ERF family of transcription factors,plays a nonredundant role in plant defense[J].Plant Physiol, 2007, 143(1): 400-409.
    [14] Mou Z,Fan W,Dong X.Inducers of plant systemic acquired resistance regulate NPR1 function through redox changes[J].Cell, 2003, 113(7): 935-944.
    [15] Kinkema M,Fan W,Dong X.Nuclear localization of NPR1 is required for activation of PR gene expression[J].Plant Cell, 2000, 12(12): 2339-2350.
    [16] Ristaino J B,Johnston S A.Ecologically based approaches to management of Phytophthora blight on bell pepper[J].Plant Dis, 1999, 83(12): 1080-1089.
    [17] Hwang B K,Kim C H.Phytophthora blight of pepper and its control in Korea[J].Plant Dis, 1995, 79(3): 221-227.
    [18] Kelman A.The relationship of pathogenicity in Pseudomonas solanacearum to colony appearance on a tetrazolium medium[J].Phytopathology, 1954, 44(12): 693-695.
    [19] Jung J,Won S Y,Suh S C,Kim H R,Wing R,Jeong Y,Hwang I,Kim M.The barley ERF-type transcription factor HvRAF confers enhanced pathogen resistance and salt tolerance in Arabidopsis[J].Planta, 2007, 225(3): 575-588.
    [20] Oh S K,Park J M,Joung Y H,Lee S,Chung E,Kim S Y,Yu S H,Choi D.A plant EPF-type zinc-finger protein,CaPIF1,involved in defence against pathogens[J].Mol Plant Pathol, 2005, 6(3): 269-285.
    [21] Livak K J,Schmittgen T D.Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) method[J].Methods, 2001, 25(4): 402-408.
    [22] Bae H,Roberts D P,Lim H S,Strem M D,Park S C,Ryu C M,Melnick R L,Bailey B A.Endophytic Trichoderma isolates from tropical environments delay disease onset and induce resistance against Phytophthora capsici in hot pepper using multiple mechanisms[J].Mol Plant Microbe Interact, 2011, 24(3): 336-351.
    [23] Chen N,Goodwin P,Hsiang T.The role of ethylene during the infection of Nicotiana tabacum by Colletotrichum destructivum[J].J Exp Bot, 2003, 54(392): 2449.
    [24] Sohn S I,Kim Y H,Kim B R,Lee S Y,Lim C K,Hur J H,Lee J Y.Transgenic tobacco expressing the hrpNEP gene from Erwinia pyrifoliae triggers defense responses against Botrytis cinerea[J].Mol Cells, 2007, 24(2): 232-239.
    [25] Takahashi H,Chen Z,Du H,Liu Y,Klessig D F.Development of necrosis and activation of disease resistance in transgenic tobacco plants with severely reduced catalase levels[J].Plant J, 1997, 11(5): 993-1005.
    [26] Takahashi Y,Nagata T.parB: an auxin-regulated gene encoding glutathione S-transferase[J].Proc Natl Acad Sci USA, 1992, 89(1): 56-59.
    [27] Cao H,Bowling S A,Gordon a S,Dong X.Characterization of an Arabidopsis mutant that is nonresponsive to inducers of systemic acquired resis-tance[J].Plant Cell, 1994, 6(11): 1583-1592.
    [28] Cao H,Glazebrook J,Clarke J D,Volko S,Dong X.The Arabidopsis NPR1 gene that controls systemic acquired resistance encodes a novel protein containing ankyrin repeats[J].Cell, 1997, 88(1): 57-63.
    [29] Spoel S H,Koornneef A,Claessens S M C,Korzelius J P,Van Pelt J A,Mueller M J,Buchala A J,M閠raux J P,Brown R,Kazan K,et al.NPR1 modulates cross-talk between salicylate- and jasmonate-dependent defense pathways through a novel function in the cytosol[J].Plant Cell, 2003, 15(3): 760-770.
    [30] Despr閟 C,Delong C,Glaze S,Liu E,Fobert P R.The Arabidopsis NPR1/NIM1 protein enhances the DNA binding activity of a subgroup of the TGA family of bZIP transcription factors[J].Plant Cell, 2000, 12(2): 279-290.
    [31] Nandi A,Kachroo P,Fukushige H,Hildebrand D F,Klessig D F,Shah J.Ethylene and jasmonic acid signaling affect the NPR1-independent expression of defense genes without impacting resistance to Pseudomonas syringae and Peronospora parasitica in the Arabidopsis ssi1 mutant[J].Mol Plant Microbe Interact, 2003, 16(7): 588-599.
    [32] Chern M,Canlas P E,Fitzgerald H A,Ronald P C.Rice NRR,a negative regulator of disease resis-tance,interacts with Arabidopsis NPR1 and rice NH1[J].Plant J, 2005, 43(5): 623-635.
  • 期刊类型引用(2)

    1. 李华. 开远市石漠化地区植被演替过程及综合治理对策. 绿色科技. 2024(06): 50-53+65 . 百度学术
    2. 韦海航,张莉苑,杨景竣,卢志锋,田红灯,李进华,樊东函,覃杰,刘佳哲,王智慧. 垂直结构对桂西北干热河谷木本植物枝叶关系的影响. 西南农业学报. 2024(05): 1071-1077 . 百度学术

    其他类型引用(0)

计量
  • 文章访问数:  2351
  • HTML全文浏览量:  2
  • PDF下载量:  1771
  • 被引次数: 2
出版历程
  • 收稿日期:  2012-04-06
  • 修回日期:  2012-05-31
  • 发布日期:  2012-10-29

目录

/

返回文章
返回